1, 染好的片子保存时间?
我司实验室的染色玻片在4℃条件下通常可保存6至12个月。
2,能否使用冰冻漂片进行TSA实验?
TSA试剂盒不适用于漂片
1.漂片厚度太厚,不利于试剂的渗透;
2.漂片在染色过程中形态会发生改变,如卷曲,褶皱等
3,样本为小鼠,是否可以选择小鼠来源的一抗?
通常不建议采取这种方式,因为如果一抗来源于小鼠,那么二抗也需使用抗小鼠的二抗,这可能会与样本中本身存在的IgG发生交叉反应,从而导致非特异性结合。
若必须使用与样本同种属来源的一抗,建议进行阴性对照实验,即在未添加一抗的情况下,仅加入二抗,以检测是否会产生非特异性信号。
4,传统荧光染色和TSA多重免疫荧光能否搭配使用?
可以,但建议将传统荧光染色安排在最后一轮进行。这是由于TSA法在抗体洗脱过程中,会同时洗脱一抗和二抗的结合物。
5,如何选择封闭液?
常用的封闭液包括牛血清和山羊血清,建议选择与二抗宿主种属相匹配的血清。
我司的plus版试剂盒中提供的抗体稀释液含有多种保护剂和防腐剂,也可以用于封闭。
6,试剂盒操作需要避光吗?
我司试剂盒的荧光染料具有优异的抗淬灭性能,因此无需在日光灯下进行避光操作,使用过程中也无需在暗环境中进行。不过,请注意避免试剂盒暴露在太阳光下直射。
7,多标实验中抗体的选择顺序有何讲究?
根据我们实验室的经验,推荐以下策略:
1、优先特异性差的、其次特异性好的开始预实验。
2、根据预实验结果,需要调整顺序,难以洗脱的抗体,摆在最后一轮;
3、比较难做的指标放在前面几轮做(比如 foxp3)
4、兔鼠一抗交叉做
5、修复/洗脱方式是需要根据一抗调整条件的
第一轮通常做适合 EDTA 9.0 修复的指标;根据我司经验,第一轮通常采用 EDTA 9.0/高压 6.0 第二轮及以后通常采用 6.0 ,多抗建议 6.0 。
8,非特异性产生与改善方法?
1.抗体是多克隆的,容易产生非特异,可以换用单克隆抗体或者降低浓度以及修复强度来改善;
2.信号放大过强,可以降低染液反应时间或者浓度;
3.一抗浓度过高或者修复过度,采用比较低的稀释抗体比例,或降低修复强度(温度或者时间或者修复液 PH)
9,为什么会串色?
串色与多种因素有关系:
1. 可能与成像设备滤光片带宽有关系,尽量选用窄波长带宽的滤光片;
2. 可能与上一轮抗体未被完全洗脱关系,对于一些亲和力比较高的抗体比如CK等,抗体洗脱条件需要延长(提高洗脱温度时间等);
3. 可能与信号不平衡有关系,比如相邻两个通道染料,一个强度过高,一个过低,导致强的信号发生外溢;
4. 其他可能存在的原因,比如抗体弄混,下一轮抗体忘记洗脱/修复等。
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