TIL细胞疗法（Tumor-Infiltrating Lymphocyte Therapy，肿瘤浸润淋巴细胞疗法）是一种个体化过继性细胞免疫疗法，主要从患者自身肿瘤组织中分离出已能识别癌细胞的T淋巴细胞，在体外大规模扩增激活后回输，用于攻击实体瘤。

核心优势

天然识别、无需基因改造：TIL直接来源于肿瘤内部，天然具备识别该患者肿瘤抗原（含新生抗原）的能力，无需像CAR-T那样做基因编辑。

多克隆、靶向广：可同时识别多个肿瘤抗原，对异质性强的实体瘤更有优势（CAR-T在实体瘤中受限较多）。

肿瘤特异性较高：来自肿瘤组织的T细胞中肿瘤特异性比例可达约60%，高于外周血提取；自体细胞无排异、无基因整合突变风险。

本试剂盒包含了全流程试剂，能够从组织中分离扩增出需要的 TIL 细胞，同时使培养基能够满足与类器官共培养，按照 GMP 标准生产。

试剂盒信息：

货号： JFKR-TIL-100 / JFKR-TIL-500

品名：TIL细胞分离扩增试剂盒

https://www.neorise.cn/product/NR53017

试剂盒组分：

试剂到货处理：

1. TIL细胞扩增培养基A 、TIL细胞激活培养基B在4 ℃可保存3个月，收到货后4 ℃保存，开封后建议1个月内使用完毕，长期不用建议放于-20 ℃储存，避免反复冻融超过2次。

2.组织保存液G、组织消化液C内含有维持细胞活性营养成分，为了保持试剂营养成分的活性，长期不用建议放于-20 ℃储存，避免反复冻融超过2次。

操作步骤与方法：

1. 组织前处理

1.1 实验材料

需提前准备缓冲液 F（4 ℃预冷）、组织保存液 G、取样管、组织运输箱、冰袋。

1.2 组织的获取与运输

组织的取样与运输是TIL提取成功的第一个环节，也是最容易忽视的环节。若组织前期保存不当会导致细胞活性差、污染、正常细胞少等问题，降低TIL提取成功率。

组织应在离体的30 min内放入组织保存液G，缓冲液F清洗3-5次，将组织表面血液冲洗干净，放入组织保存液G中，取样管于4 ℃低温保存运输（72 h内）到实验室。

2. TIL 细胞培养（以 24 孔板为例）

2.1 实验材料

需提前准备缓冲液F（4 ℃）、组织消化液C（37 ℃）、分离液 D、分离液 E、TIL扩增培养基A、TIL激活培养基B（室温或 37 ℃）、镊子（10㎝）、尖头眼科手术剪/手术刀片、一次性60 mm培养皿、1.5 mL/15 mL/50 mL离心管、100㎛细胞滤网、3 mL巴氏吸管/1000 μL移液枪、24 孔细胞培养板、金属冰盒。

2.2 TIL 细胞提取

2.2.1 组织的处理

取材后的组织建议在2 – 8 ℃条件下保存运输，快速转运至洁净实验室进行TIL提取实验流程，组织拍照并登记详细信息。

2.2.1.1 组织的清洗

取样管消毒后，在超净台中将组织取出来，放入培养皿中，加入缓冲液F，用3 mL巴氏吸管或1000 μL移液枪吹打清洗，重复清洗操作三次及以上。

2.2.1.2 组织的解离与消化

用眼科剪或手术刀片去除组织杂质，镊子转移至1.5 mL EP管中，用眼科剪进一步将组织机械解离成体积约为1~3 mm3的组织块，转移至15 mL EP管中，加入8 mL组织消化液37 ℃震荡消化60min。消化过程每20min显微镜下观察组织消化情况，取少量消化液在显微镜下观察，观察到较多的单个细胞后进行下一步操作。

2.2.1.3 组织的过滤

加入3倍体积的缓冲液F终止消化，消化完成组织通过 100 μm 孔径的细胞筛网过滤，收集滤液。

2.2.1.4 TIL 细胞分离

按顺序依次添加TIL分离液D 2ml，分离液E 4ml于15ml 离心管，再沿离心管壁轻轻加入组织滤液6ml，2000 转离心20min，收集D分离液界面上的细胞，该层富含TIL细胞的悬液，离心1500转10min。分离液E的界面层主要为肿瘤细胞。再用缓冲液F清洗TIL细胞洗2次，以除去细胞分离液，得到TIL细胞沉淀。可选择合适的TIL细胞量进行程序降温冻存。

3 TIL细胞激活扩增培养（以 24 孔板为例）

3.1 实验材料

需提前准备缓冲液 F（4 ℃）、TIL 扩增培养基 A，TIL 激活培养基 B（室温或 37 ℃）、15 mL/离心管、3ml 巴氏吸管/1000 μL 移液枪、24 孔细胞培养板。

3.2 TIL 细胞激活

将分离好的TIL细胞计数。

TIL细胞激活培养基B 重悬TIL细胞（浓度 200000 cell/ml），每孔添加1.5mlTIL细胞激活培养基B，连续激活48h。

3.2.1 TIL 细胞扩增

激活后的TIL细胞，缓慢沿细胞板侧壁吸取TIL细胞激活培养基B（注意：不要吸取细胞）

每孔添加1.5ml TIL细胞扩增培养基A连续扩增培养。

在连续培养第4天（此时可观察到T细胞明显成团），缓慢沿细胞板侧壁吸取TIL细胞扩增培养基A，添加新鲜TIL细胞扩增培养基 A，连续培养5天（此时可观察到大量T细胞明显成团悬浮于培养基内）。

可进行流式分选鉴定。

3.2.2 原代分离TIL细胞复苏

3.2.2.1 实验材料

缓冲液F、TIL细胞扩增培养基A、 TIL细胞扩增培养基B、孔细胞培养板、15mL离心管、水浴锅、3mL 巴氏吸管/移液枪。

3.2.2.2 原代分离 TIL 细胞复苏

取15ml离心管，添加8ml 缓冲液F待用

从低温环境中取出冻存的细胞，快速置于37 ℃水浴锅中融解，水浴融解过程中，需轻轻摇动冻存管，以确保冻存液在短时间内完全融解。将解冻后的T细胞快速转移至15 mL离心管，使用移液枪轻柔吹打 6-8次，1000转离心5 min弃上清。将T细胞沉淀计数，添加合适的TIL细胞激活培养基B混匀（浓度 500000 cell/ml），每孔添加1.5ml混合液于24 孔细胞培养板内观察培养48h。激活后的TIL细胞，缓慢沿细胞板侧壁吸取TIL细胞激活培养基 B（注意：不要吸取细胞）每孔添加1.5ml TIL细胞扩增培养基A连续扩增培养。

在连续培养第 4 天（此时可观察到 T 细胞明显成团），缓慢沿细胞板侧壁吸取TIL细胞扩增培养基A，添加新鲜TIL细胞激扩增培养基 A，连续培养5天（此时可观察到大量T细胞明显成团悬浮于培养基内）。

可进行流式分选鉴定

3.2.3 原代分离TIL细胞扩增培养

将悬浮于培养基内的T细胞团收集于15ml离心管，1000转离心5min，细胞计数（浓度为 200000 cell/ml）。TIL细胞扩增培养基A重新接种24孔细胞培养板。根据接种密度不同48-72h可完成扩增。

4 TIL细胞冻存（以24孔板为例）

4.1 实验材料

传代缓冲液F（4 ℃）、TIL冻存液 H（4 ℃）、15 mL离心管、细胞冻存管、程序降温盒、移液枪。

4.2 TIL 细胞冻存

将悬浮于培养基内的 T 细胞团收集于15ml离心管，1000转离心5min，细胞计数，添加TIL冻存液H（浓度为5000000 cell/ml），转移至细胞冻存管内，进行程序降温。

5 TIL细胞复苏培养（以 24 孔板为例）

5.1 实验材料

缓冲液F、 TIL细胞扩增培养基 B、24孔细胞培养板、15mL 离心管、水浴锅、3mL巴氏吸管/移液枪。

5.2 TIL 细胞复苏培养

取15ml离心管，添加8ml缓冲液F待用

从低温环境中取出冻存的细胞，快速置于37 ℃水浴锅中融解，水浴融解过程中，需轻轻摇动冻存管，以确保冻存液在短时间内完全融解。将解冻后的T细胞快速转移至15 ml离心管，使用移液枪轻柔吹打6-8次，1000转离心5 min弃上清。将 T 细胞沉淀计数，添加合适的TIL细胞扩增培养基A混匀，每孔添加1.5nl 混合液于24孔细胞培养板内观察培养。

运用范围:

For Laboratory Research Use Only. Not For Use In Diagnostic Procedures.

晗澄生物类器官一站式解决方案：                                                                                                                             晗澄生物多重荧光染色mIHC一站式解决方案：

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